Частота колонизации «гипервирулентными» штаммами Klebsiella pneumoniae новорожденных и грудных детей с внебольничной и нозокомиальной клебсиеллезной инфекцией

В настоящее время наметилась тенденция роста числа инвазивных форм инфекции (абсцесс печени, менингит, энд-офтальмит и др.), вызванных «гипервирулентными» штаммами Klebsiella pneumoniae (англ. hvKP) у взрослых. Нами изучена частота выделения hvKP у новорожденных и грудных детей с различными формами внебольничной и нозокомиальной клебсиеллезной инфекции. «Гйпервирулентными» считали штаммы клебсиелл, обладающие геном rmpA, который ассоциируется с «гипермукоидным фенотипом» клебсиелл. Детекция гена проводилась методом полимеразной цепной реакции. Всего исследовано 85 штаммов. Ген rmpA обнаружен у 20 (23%) клинических штаммов Kl. pneumoniae, в том числе у 14 (33,3%) кишечных штаммов, у 3 (25%) штаммов, выделенных из мочи, и 3 (15,7%) штаммов из мазков со слизистой оболочки зева. У штаммов клебсиелл, выделенных из крови (n=5), эндотрахеальной трубки (n=6), спинномозговой жидкости (n=1), ген не обнаружен. hvKP достоверно чаще выделялись у детей с внебольничной инфекцией (32%), чем у детей с нозокомиальной инфекцией (11,4%; отношение шансов 3,647; 95% доверительный интервал 1,100—12,096). Из 20 детей, инфицированных hvKP, 12 (60%) были бессимптомными носителями, у 3 (15%) имелись симптомы инфекции мочевых путей и у 5 (25%) — симптомы кишечной инфекции. Инфицированные дети имеют потенциальный риск эндогенной диссеминации возбудителя, а также могут представлять эпидемиологическую опасность для окружающих.

1. Воложанцев Н.В., Мякинина В.П., Веревкин В.В., Комиса-рова Е.В., Красильникова В.М. и др. Выделение и молекулярно-генетический анализ бактериофагов для идентификации патогенных эшерихий и клебсиелл. Инфекция и иммунитет 2016; 6(3): 15.

2. Paczosa M.K., Mecsas J. Klebsiella pneumoniae: going on the offense with a strong defense. Microbiol Mol Biol Rev 2016; 80(3): 629-661. DOI: 10.1128/MMBR.00078-15

3. Broberg C.A., Palacios M., Miller V.L. Klebsiella: a long way to go towards understanding this enigmatic jet-setter. F1000Prime Rep 2014; 6: 6-64. DOI: 10.12703/P6-64

4. Rice L.B. Progress and challenges in implementing the research on ESKAPE pathogens. Infect Control Hosp Epidemiol 2010; 31: 7-10. DOI: 10.1086/655995

5. Pendleton J.N., Gorman S.P., Gilmore B.F. Clinical Relevance of the ESKAPE Pathogens. Expert Rev Anti Infect Ther 2013; 11(3): 297-308. DOI: 10.1586/eri.13.12.

6. Li B., Zhao Y., Liu C., Chen Z, Zhou D. Molecular pathogenesis of Klebsiella pneumoniae. Future Microbiol 2014; 9(9): 1071-1081. DOI: 10.2217/fmb.14.48

7. Podschun R., Ullmann U.Klebsiella spp. As Nosocomial Pathogens: Epidemiology, Taxonomy, Typing Methods, and Pathogenicity Factors. Clin Microbiol Rev 1998; 4(11): 589-603.

8. Aljanaby A.A.J., Alhasani A.H.A. Virulence factors and antibiotic susceptibility patterns of multidrug resistance Klebsiella pneumoniae isolated from different clinical infections. Afr J Microbiol Res 2016; 10: 829-843.

9. Janda J.M., Abbott S.L. The Genera Klebsiella and Raoultella. The Enterobacteria. 2nd ed. Washington, USA: ASM Press, 2006; 115-129.

10. Hentzien M., Rosman J., Decre D., Brenkle K., Mendes-Mar-tins L., Mateu P. Seven hypervirulent ST380 Klebsiella pneumoniae septic localizations. Med Mal Infect 2017; 47: 171— 173. DOI: 10.1016/j.medmal.2016.10.002

11. Shon A.S., Bajwa R.P., Russo T.A. Hypervirulent (hyper-mucoviscous) Klebsiella pneumoniae: a new and dangerous breed. Virulence 2013; 4: 107-118. DOI: 10.4161/viru.22718

12. Marcoleta A.E., Bernos-Pasten C., Nunez G., Monasterio O., Lagos R. Klebsiella pneumoniae asparagine tDNAs are integration hotspots for different genomic islands encoding mi-crocin E492 production determinants and other putative virulence factors present in hypervirulent strains. Front Microbiol 2016; 7: 1-17. DOI: 10.3389/fmicb.2016.00849

13. Conlan S., Kong H.H., Segre J.A. Species-level analysis of DNA sequence data from the NIH Human Microbiome Project. PloS One 2012; 7(10): 47075-47077. DOI: 10.1371/journal.pone.0047075

14. Sun Y., Wu H., Shen D. Detection and Analysis of Regional Trends of Klebsiella pneumoniae Causing Liver Abscess. Clin Microbiol 2015; 4: 208. DOI: 10.4172/2327-5073.1000208

15. Janda J.M. The Genus Klebsiella: An Ever-Expanding Panorama of Infections, Disease-Associated Syndromes, and Problems for Clinical Microbiologist. Clin Microbiol Case Rep 2015; 1: 2.

16. Lee I.R., Molton J.S., Wyres K.L., Gorrie C., Wong J., Hoh C.H. et al. Differential host susceptibility and bacterial virulence factors driving Klebsiella liver abscess in an ethnically diverse population. Sci Rep 2016; 6: 29316. DOI: 10.1038/srep29316

17. TuY.C., Lu M.C., Chiang M.K., Huang S.P., Peng H.L., Chang H.Y. et al. Genetic requirements for Klebsiella pneu-moniae-induced liver abscess in an oral infection model. Infect Immunity 2009; 77(7): 2657-2671. DOI: 10.1128/IAI.01523-08

18. Khaertynov K.S., Anokhin V.A., Davidyuk Y.N., Nico-laeva I.V., Khalioullina S.V., Semyenova D.R. et al. Case of Meningitis in a Neonate Caused by an Extended-Spectrum-Beta-Lactamase-Producing Strain of Hypervirulent Klebsiella pneumoniae. Front Microbiol 2017; 8: 1576. DOI: 10.3389/fmicb.2017.01576

19. Gu D.X., Huang Y.L., Ma J.H., Zhou H.W., Fang Y, Cai J.C. et al. Detection of colistin resistance gene mcr-1in hypervirulent Klebsiella pneumonia and Escherichia coli isolates from an infant with diarrhea in China. Antimicrob Agents Chemo-ther 2016; 60: 5099-5100. DOI: 10.1128/AAC.00476-16

20. Kishibe S., Okubo Y., Morino S., Hirotaki S, Tame T., Aoki K. et al. Pediatric hypervirulent Klebsiella pneumoniae septic arthritis. Pediatr Int 2016; 58(5): 382-385. DOI: 10.1111/ped.12806

21. Harada S, Tateda K., Mitsui H., Hattori Y., Okubo M., Kimu-ra S. et al. Familial spread of a virulent clone of Klebsiella pneumoniae causing primary liver abscess. J Clin Microbiol 2011; 49(6): 2354-2356. DOI: 10.1128/JCM.00034-11