Preview

Российский вестник перинатологии и педиатрии

Расширенный поиск

Вторичная гипероксалурия у детей: терапевтический потенциал пре- и пробиотиков

https://doi.org/10.21508/1027-4065-2021-66-2-35-40

Полный текст:

Аннотация

Цель работы состояла в представлении современных данных о способности про- и пребиотических препаратов предупреждать формирование вторичной гипероксалурии у детей. Для этого проведен анализ данных литературы с обобщением результатов оригинальных исследований, касающихся способности про- и пребиотиков предупреждать развитие и снижать выраженность лабораторных проявлений вторичной гипероксалурии путем улучшения состояния кишечной микрофлоры, участвующей в деградации оксалатов. Показана способность Oxalobacter formigenes, Lactobacillus spp. и Bifidobacterium spp. участвовать в метаболизме оксалатов, снижать экскрецию оксалатов с мочой, тем самым уменьшая выраженность лабораторных проявлений вторичной гипероксалурии. Представлена возможность терапевтической коррекции заболевания путем улучшения состояния кишечной микрофлоры как препаратами пробиотического действия, содержащими в своем составе штаммы Lactobacillus spp. и Bifidobacterium spp., так и пребиотическими средствами. Сделан вывод, что внедрение в терапию вторичной гипероксалурии препаратов, нормализующих состояние кишечной микрофлоры (про- и пребиотиков), поможет рационализировать тактику ведения пациентов и поспособствует уменьшению проявлений вторичной гипероксалурии.

Об авторах

А. Н. Обухова
ФГБОУ ВО «Приволжский исследовательский медицинский университет» Минздрава России
Россия

Обухова Анна Николаевна – асп. кафедры госпитальной педиатрии Приволжского исследовательского медицинского университета

603950, БОКС-470, Нижний Новгород, пл. Минина и Пожарского, д. 10/1

 



О. В. Халецкая
ФГБОУ ВО «Приволжский исследовательский медицинский университет» Минздрава России
Россия

Халецкая Ольга Владимировна – д.м.н., проф., зав. кафедрой госпитальной педиатрии Приволжского исследовательского медицинского университета

603950, БОКС-470, Нижний Новгород, пл. Минина и Пожарского, д. 10/1

 



Список литературы

1. Юрьева Э.А., Длин В.В., Новикова Н.Н., Воздвиженская Е.С., Харабадзе М.Н., Князева Д.П. Обменные нефропатии у детей: причины развития, клинико-лабораторные проявления. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2016; 61(2): 28–34. [Yur’yeva E.A., Dlin V.V., Novikova N.N., Vozdvizhenskaya E.S., Kharabadze M.N., Knyazeva D.P. Metabolic nephropathies in children: causes of development, clinical and laboratory manifestations. Rossiyskiy vestnik perinatologii i pediatrii. 2016; 61(2): 28–34. (in Russ.)]

2. Длин В.В., Османов И.М. Дисметаболическая нефропатия с оксалатно-кальциевой кристаллурией. Эффективная фармакология 2013; 4(42): 8–16. [Dlin V.V., Osmanov I.M. Dysmetabolic nephropathy with oxalate-calcium crystalluria. Jeffektivnaya farmakologiya 2013; 4(42): 8–16. (in Russ.)]

3. Степаненко В.М. Клинико-лабораторная характеристика обменной нефропатии у детей. Курортная медицина 2017; 3:150–157. [Stepanenko V.M. Clinical and laboratory characteristics of metabolic nephropathy in children. Kurortnaya meditsina 2017; 3:150–157. (in Russ.)]

4. Аверьянова Н.И., Балуева Л.Г., Иванова Н.В., Рудавина Т.И. Нарушения обмена щавелевой кислоты у детей. Современные проблемы науки и образования 2015; 3: 174–179. [Aver’yanova N.I., Baluyeva L.G., Ivanova N.V.,Rudavina T.I. Disorders of oxalic acid metabolism in children. Sovremennye problemy nauki i obrazovaniya 2015; 3: 174–179. (in Russ.)]

5. Юрьева Э.А., Морозов С.Л. Дисметаболические нефропатии у детей. Практика педиатра. 2017; 4: 34–38. [Yur’yeva E.A., Morozov S.L. Dysmetabolic nephropathies in children. Praktika pediatra. 2017; 4: 34–38. (in Russ.)]

6. Длин В.В., Османов И.М., Чугунова О.Л. Инфекция мочевой системы у детей: Руководство для врачей. Под ред. В.В. Длина, И.М. Османова, О.Л. Чугуновой (сост. С.Л. Морозов). 2-е изд., доп. М.: Оверлей, 2017. [Dlin V.V., Osmanov I.M., Chugunova O.L. Urinary infection in children: a guide for physicians. Ed. V.V. Dlin, I.M. Osmanov, O.L. Chugunova (comp. S.L. Morozov). 2nd ed., suppl. M.: Overlei, 2017. (in Russ.)]

7. Suryavanshi M.V., Bhute S.S., Jadhav S.D., Bhatia M.S., Gune R.P., Shouche Y.S. Hyperoxaluria leads to dysbiosis and drives selective enrichment of oxalate metabolizing bacterial species in recurrent kidney stone endures. Scientific Reports 2016; 6: 1–15

8. Mehta M., Nazzal L. The role of the microbiome in kidney stone formation. Int J Surg 2016; 36: 607–612 DOI: 10.1016/j.ijsu.2016.11.024

9. Miller A.W., Oakeson K.F., Dale C., Dearing M.D. Microbial community transplant results in increased and long-term oxalate degradation. Microb Ecol 2016; 72 (2): 470–478. DOI: 10.1007/s00248-016-0800-2

10. Zhao C., Yang H., Zhu X., Li Y., Wang N., Han S. et al. Oxalate-degrading enzyme recombined lactic acid bacteria strains reduce hyperoxaluria. Urology 2018; 113: 253.e1–253.e7. DOI: 10.1016/j.urology.2017.11.038

11. Cresci G., Bawden Е. Gut microbiome: what we do and don’t know. Nutr Clin Pract 2015; 30 (6): 734–746. DOI: 10.1177/0884533615609899

12. Milani C., Duranti S., Bottacini F., Casey E., Turroni F., Mahony J. et al. The first microbial colonizers of the human gut: composition, activities, and health implications of the infant gut microbiota. Microbiol Mol Biol Rev 2017; 81(4): 1–67. DOI: 10.1128/MMBR.00036-17

13. Assimos D.G. Oxalobacter formigenes-Associated Host Features and Microbial Community Structures Examined Using the American Gut Project. J Urol 2018; 199(4):888. DOI: 10.1016/j.juro.2018.01.037

14. Liu M., Koh H., Kurtz Z.D., Battaqlia T., PeBenito A., Li H. et al. Oxalobacter formigenes-associated host features and microbial community structures examined using the American Gut Project. Microbiome 2017; 5(1):108. DOI: 10.1186/s40168-017-0316-0

15. Sadaf H., Raza S., Hassan S. Role of gut microbiota against calcium oxalate. Microb Pathog 2017; 109: 287–291. DOI: 10.1016/j.micpath.2017.06.009

16. Klimesova K., Whittamore J., Hatch M. Bifidobacterium animalis subsp. lactis decreases urinary oxalate excretion in a mouse model of primary hyperoxaluria. Urolithiasis 2015; 43(2): 107–117. DOI: 10.1007/s00240-014-0728-2

17. Sasikumar P., Gomathi S., Anbazhagan K., Abhishek A., Paul E., Vasudevan V. et al. Recombinant Lactobacillus plantarum expressing and secreting heterologous oxalate de- carboxylase prevents renal calcium oxalate stone deposition in experimental rats. J Biomed Sci 2014; 30: 86–99. DOI: 10.1186/s12929-014-0086-y

18. Рымашевский А.Н., Набока Ю.Л., Продеус А.П., Свирава Э.Г. Бактериальное приданое новорожденного. Смена парадигмы: нестерильность плода как норма. Status Praesens. Педиатрия и неонатология 2017; 2(41): 23–29. [Ry- mashevskiy A.N., Naboka Yu.L., Prodeus A.P., Svirava E.G. Bacterial dowry of the newborn. Paradigm shift: non-sterility of the fetus as the norm. Status Praesens. Pediatriya i neonatologiya 2017; 2(41): 23–29. (in Russ.)]

19. Беляева И.А., Бомбардирова Е.П., Турти Т.В., Потехина Т.В. Кишечная микробиота у недоношенных детей – современное состояние проблемы. Педиатрическая фармакология 2015; 3(12): 296–303. [Belyayeva I.A., Bombardirova E.P., Turti T.V., Potekhina T.V. Intestinal microbiota in premature babies-the current state of the problem. Pediatricheskaya farmakologiya 2015; 3(12): 296–303. (in Russ.)]

20. Moossavi S., Azad M.B. Origins of human milk microbiota: new evidence and arising questions. Gut Microbes 2019; 4: 1–10. DOI: 10.1080/19490976.2019.1667722

21. Turroni F., Milani C., Ferrario S., Lugli G.A., Mancabelli L., van Sinderen D. et al. Bifidobacteria and the infant gut: an example of co-evolution and natural selection. Cell Mol Life Sci 2018; 75(1): 103–118. DOI: 10.1007/s00018-017-2672-0

22. Макарова С.Г., Намазова-Баранова Л.С. Кишечная микробиота и использование пробиотиков в практике педиатра. Что нового? Педиатрическая фармакология 2015; 1(12): 38–45. [Makarova S.G., Namazova-Baranova L.S. Intestinal microbiota and the use of probiotics in pediatrician practice. What’s new? Pediatricheskaya farmakologiya 2015; 1(12): 38–45. (in Russ.)]

23. Donovan S.M. Introduction to the special focus issue on the impact of diet on gut microbiota composition and function and future opportunities for nutritional modulation of the gut microbiome to improve human health. Gut Microbes 2017; 8(2): 75–81. DOI: 10.1080/19490976.2017.1299309

24. Singh R.K., Chang H.W., Yan D., Lee K.M., Ucmak D., Wong K. et al. Influence of diet on the gut microbiome and implications for human health. J Transl Med 2017; 15(1): 73– 90. DOI: 10.1186/s12967-017-1175-y

25. Lieske J.C. Probiotics for prevention of urinary stones. Transl Med 2017; 5(2): 1–8. DOI: 10.21037/atm.2016.11.86

26. Rodríguez J.M. Probiotics: from the lab to the consumer. Nutr Hosp 2015; 31: 33–47. DOI: 10.3305/nh.2015.31.sup1.8705

27. Shokryazdan P., Faseleh Jahromi M., Liang J.B., Ho Y.W. Probiotics: From Isolation to Application. J Am Coll Nutr 2017; 36(8): 666–676. DOI: 10.1080/07315724.2017.1337529

28. Brunser O. Probiotics: innocuousness, prevention and risks. Rev Chil Pediatr 2017; 88(4): 534–540. DOI: 10.4067/S0370-41062017000400015

29. Gibson G.R., Hutkins R., Sanders M.E., Prescott S.L., Reimer R.A., Salminen S.J. et al. Expert consensus document: The International Scientific Association for Probiotics and Prebiotics (ISAPP) consensus statement on the definition and scope of prebiotics. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2017; 14(8): 491–502. DOI: 10.1038/nrgastro.2017.75

30. Markowiak P., Śliżewska К. Effects of probiotics, prebiotics, and synbiotics on human health. Nutrients 2017; 9(9): 1021– 1051. DOI: 10.3390/nu9091021

31. Matsuda K. PCR-Based detection methods for single-nucleotide polymorphism or mutation: real-time PCR and its substantial contribution toward technological refinement. Adv Clin Chem 2017; 80: 45–72. DOI: 10.1016/bs.acc.2016.11.002

32. Krawczyk B., Kur J., Stojowska-Swedrzynska K., Spibida M. Principles and applications of ligation mediated PCR methods for DNA-based typing of microbial organisms. Acta Biochim Pol 2016; 17; 63(1): 39–52. DOI: 10.18388/abp.2015_1192

33. Garofalo C., Bancalari E., Milanovic V., Cardinali F., Osimani A., Savo Sardaro M. L. et al. Study of the bacterial diversity of foods: PCR-DGGE versus LH-PCR. Int J Food Microbiol 2017; 2: 24–36. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2016.11.008

34. Padilha M., Villarreal Morales M.L., Silva Vieira A.D., Maia Costa M.G., Isay Saad S.M. A prebiotic mixture improved Lactobacillus acidophilus and Bifidobacterium animalis gastrointestinal in vitro resistance in petit-suisse. Food Funct 2016; 7(5): 2312–2319. DOI: 10.1039/c5fo01592h

35. Cherdyntseva T.A., Kotova I.B., Netrusov A.I. The isolation, identification and analyses of Lactobacillus genus bacteria with probiotic potential. Adv Exp Med Biol 2016; 897: 103– 111. DOI: 10.1007/5584_2015_5008

36. Гасилина Т.В., Бельмер С.В. Коррекции нарушений кишечного микробиоценоза: значение метаболических пробиотиков. Практика педиатра 2016; 4: 53–58. [Gasilina T.V., Bel’mer S.V. Correction of intestinal microbiocenosis disorders: the value of metabolic probiotics. Praktika pediatra 2016; 4: 53–58. (in Russ.)]

37. Di Cerbo A., Palmieri B., Aponte M., Morales-Medina J.C., Iannitti T. Mechanisms and therapeutic effectiveness of lactobacilli. J Clin Pathol 2016; 69(3): 187–203. DOI: 10.1136/jclinpath-2015-202976

38. Klimesova K., Whittamore J.M., Hatch M. Bifidobacterium animalis subsp. lactis decreases urinary oxalate excretion in a mouse model of primary hyperoxaluria. Urolithiasis 2015; 43(2): 107–117. DOI: 10.1007/s00240-014-0728-2

39. Sanders M.E. Probiotics and microbiota composition. BMC Med 2016; 14(1): 82–84. DOI: 10.1186/s12916-016-0629-z

40. Bindels L.B., Delzenne N.M., Cani P.D., Walter J. Towards a more comprehensive concept for prebiotics. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2015; 12: 303–310. DOI: 10.1038/nrgastro.2015.47

41. Orel R., Reberšak L. Clinical effects of prebiotics in pediatric population. Indian Pediatr 2016; 53(12): 1083–1089

42. Rasmussen H.E., Hamaker B.R. Prebiotics and inflammatory bowel disease. Gastroenterol Clin North Am 2017; 46(4): 783–795. DOI: 10.1016/j.gtc.2017.08.004

43. Holscher H.D. Dietary fiber and prebiotics and the gastrointestinal microbiota. Gut Microbes 2017; 8(2): 172–184. DOI: 10.1080/19490976.2017.1290756

44. Singla V., Chakkaravarthi S. Applications of prebiotics in food industry: a review. Food Sci Technol Int 2017; 23(8): 649– 667. DOI: 10.1177/1082013217721769

45. Wegh C.A.M., Schoterman M.H.C., Vaughan E.E., Belzer C., Benninga M.A. The effect of fiber and prebiotics on children’s gastrointestinal disorders and microbiome. Expert Rev Gastroenterol Hepatol 2017; 11(11): 1031–1045. DOI: 10.1080/17474124.2017.1359539

46. Herve V., Junier T., Bindschedler S., Verrecchia E., Junier P. Diversity and ecology of oxalotrophic bacteria. World J Microbiol Biotechnol 2016; 32(2): 28–36. DOI: 10.1007/s11274-015-1982-3

47. Arvans D., Jung Y.C., Antonopoulos D., Koval J., Granja I., Bashir M. et al. Oxalobacter formigenes – derived bioactive factors stimulate oxalate transport by intestinal epithelial cells. J Am Soc Nephrol 2017; 28(3): 876–887. DOI: 10.1681/ASN.2016020132

48. Turroni F., Milani C., Duranti S., Mancabelli L., Mangifesta M., Viapppiani A. et al. Deciphering bifidobacterial-mediated metabolic interactions and their impact on gut microbiota by a multi-omics approach. ISME J 2016; 10(7): 1656–1668. DOI: 10.1038/ismej.2015.236

49. Jairath A., Parekh N., Otano N., Mishra S., Ganpule A., Sabnis R. et al. Oxalobacter formigenes: opening the door to probiotic therapy for the treatment of hyperoxaluria. J Urol 2015; 49(4): 334–337. DOI: 10.3109/21681805.2014.996251

50. Assimos D.G. Oxalobacter formigenes: opening the door to probiotic therapy for the treatment of hyperoxaluria. J Urol 2015; 194(2): 424–425. DOI: 10.1016/j.juro.2015.05.039


Для цитирования:


Обухова А.Н., Халецкая О.В. Вторичная гипероксалурия у детей: терапевтический потенциал пре- и пробиотиков. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2021;66(2):35-40. https://doi.org/10.21508/1027-4065-2021-66-2-35-40

For citation:


Obukhova A.N., Khaletskaya O.V. The secondary hyperoxaluria in children: the therapeutic potential of prebiotics and probiotics. Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics). 2021;66(2):35-40. (In Russ.) https://doi.org/10.21508/1027-4065-2021-66-2-35-40

Просмотров: 68


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1027-4065 (Print)
ISSN 2500-2228 (Online)